低蛋白饲料补充必需氨基酸对异育银鲫生长、氨基酸转运和mTOR信号通路相关基因的影响.pdf
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1、doi:10.7541/2023.2023.0093低蛋白饲料补充必需氨基酸对异育银鲫生长、氨基酸转运和mTOR信号通路相关基因的影响何林岳1,2 刘昊昆1 韩 冬1 朱晓鸣1 金俊琰1 杨云霞1 解绶启1(1.中国科学院水生生物研究所淡水生态与生物技术国家重点实验室,武汉 430072;2.中国科学院大学,北京 100049)摘要:实验以初重为(12.710.11)g的异育银鲫“中科5号”(Carassius gibelio var.CAS V)为研究对象,基于异育银鲫必需氨基酸需求量,探究在低蛋白饲料中补充必需氨基酸对异育银鲫生长、消化、氨基酸转运和mTOR信号通路相关基因表达的影响。实验
2、设计3组等能饲料:CON组(35%粗蛋白)、LP组(28%粗蛋白)和LP+EAA组(28%粗蛋白+晶体氨基酸),养殖周期为50d。实验结果显示:低蛋白饲料中补充必需氨基酸显著提高异育银鲫生长性能(P0.05),并与CON组无显著差异(P0.05);LP+EAA组的肝脏谷草转氨酶活性显著高于LP组(P0.05),而谷丙转氨酶活性各组间无显著差异(P0.05);补充必需氨基酸对肠道中胰蛋白酶和淀粉酶活性有显著影响(P0.05),而对糜蛋白酶和脂肪酶无显著影响(P0.05)。肠道中cat2、asct2和b0at1三种氨基酸转运蛋白显著上调(P0.05),LP组的b0,+at的相对表达量显著下调(P0
3、.05),而pept1的表达各组间无显著差异(P0.05);肝脏中LP组tor相对表达量显著降低(P0.05),LP+EAA组的s6k1表达水平显著上调(P0.05),而4ebp2和eif4e的相对表达量在各组间无显著差异(P0.05);背肌中LP+EAA组的tor表达水平显著上调(P0.05),LP组的eif4e表达水平显著下调(P0.05),而s6k1和4ebp2的相对表达量在各组间无显著差异(P0.05)。综上所述,向异育银鲫“中科5号”幼鱼饲料中补充必需氨基酸至需求量可以将饲料蛋白水平由35%降至28%,而不会对生长、氨基酸转运和mTOR信号通路相关基因表达等产生负面影响。关键词:低蛋
4、白饲料;必需氨基酸;生长;氨基酸转运;mTOR信号通路;异育银鲫中图分类号:S965.1 文献标识码:A 文章编号:1000-3207(2024)01-0001-09 蛋白质是对于鱼类生长最为关键的营养因子1,鱼类的蛋白质需求量普遍高于畜禽动物2,饲料蛋白水平过高带来高昂成本的同时,还容易加剧养殖水体水质恶化3。蛋白质进入鱼体,在消化酶的作用下被水解为氨基酸进行消化吸收,故鱼类实际上没有特定的蛋白质需求,而是对组成蛋白质的氨基酸的需求4,水产饲料中氨基酸的平衡及含量,尤其是必需氨基酸的平衡及含量直接影响到鱼类生长、肌肉蛋白质沉积、蛋白质利用效率及养殖水环境氮排放5。随着晶体氨基酸生产技术的成熟
5、,在饲料中添加适量晶体氨基酸,不仅能够减少蛋白原料的用量,降低饲料成本,还能促进生长、改善鱼体健康状况等6,最近有研究指出,斑点叉尾鮰(Ietalurus Punetaus)饲料蛋白水平由32%降至26%并额外补充赖氨酸和组氨酸至平衡,能够维持鱼体正常生长水平7;在布氏鲳鲹(Trachinotus blochii)饲料中补充赖氨酸和蛋氨酸可以降低其蛋白需求,提高鱼体生长性能8。必需氨基酸除了构成蛋白质以外,还作为信号分子参与机体蛋白质代谢等多种生物学过程9。雷帕霉素靶蛋白(Mechanistic Target of Rapamycin,mTOR)被认为是调节哺乳动物和鱼类细胞生长及蛋白质翻译起
6、始的关键控制元件10,11,必需氨基酸可以激活mTOR复合物1,然后上调下游核糖体蛋白S6激酶1(Ribosomal protein S6 kinase 1,S6K1),并抑制真核翻译因子4E结合蛋白2(4E-binding protein 2,第 48 卷 第 1 期水 生 生 物 学 报Vol.48,No.1 2024 年 1 月ACTA HYDROBIOLOGICA SINICAJ a n.,2 0 2 4 收稿日期:2023-03-24;修订日期:2023-05-09基金项目:大宗淡水鱼产业技术体系(CARS-45-09)资助 Supported by the Earmarked Fu
7、nd for CARS(CARS-45-09)作者简介:何林岳(1998),女,硕士;主要从事鱼类生理生态学研究。E-mail:通信作者:刘昊昆(1984),E-mail:The Author(s)2024.This is an open access article under the CC-BY 4.0 License(https:/creativecommons.org/licenses/by/4.0/).4EBP2)和真核翻译起始因子4E(Eukaryotic transla-tion initiation factor 4E,eIF4E)的表达水平1215。有研究指出,极低蛋白饮食会
8、抑制小鼠下丘脑mTOR信号通路从而导致体重下降16;在团头鲂(Megalo-brama amblycephala)的饲料中添加适量精氨酸可以刺激mTOR的表达从而促进鱼体生长17;对鳜(Siniperca chuatsi)进行脑室注射亮氨酸也能够刺激mTOR信号传导18。异育银鲫(Carassius gibelio)是我国重要的经济性淡水养殖鱼类,2021年全国总产量高达278万吨19。异育银鲫“中科5号”(Carassius gibelio var.CAS V)是利用银鲫特有的异精雌核生殖培育出的子代,较“中科3号”生长更快且更耐受低营养饲料(低蛋白和低鱼粉)20,具有重要的经济价值和社会效
9、益。目前对异育银鲫必需氨基酸需求量已有所研究,本实验基于必需氨基酸需求量以异育银鲫“中科5号”幼鱼为研究对象,探究低蛋白饲料中补充必需氨基酸对异育银鲫生长、消化及蛋白合成的影响。1 1 材料与方法 1.11.1 实验饲料本实验制备了3种等能(18%kJ/g)半纯化饲料,分别为对照组(粗蛋白含量35%)、低蛋白组(粗蛋白含量28%)和补充必需氨基酸组(粗蛋白含量28%)。饲料以酪蛋白和谷朊粉为主要蛋白源,玉米淀粉为碳水化合物源,鱼油和豆油等比例混合为脂肪源,参照异育银鲫的必需氨基酸需求量添加晶体氨基酸。对所有原料进行研磨粉碎,混合均匀后过100目筛网加水调配,用制粒机(SLP-45,渔业机械设备
10、研究所,中国上海)制备成2 mm粒径的颗粒饲料,于65烘箱烘干后放置4冷库中保存备用。饲料配方如表 1所示,其中,饲料的必需氨基酸组成见表 2。1.21.2 实验鱼及饲养管理实验鱼来自中国科学院水生生物研究所官桥渔场,实验地点为湖北省荆州市石首市老河长江四大家鱼原种场,养殖系统为室外池塘网箱(2 m2 m2 m)。正式养殖实验前将鱼在网箱中驯养2周以确保实验鱼对养殖系统的适应。实验开始前对实验鱼进行饥饿24h处理。实验包括3个处理组,每组3个重复,随机选取540尾鱼规格均匀、体质健康的鱼初重(12.710.11)g称总重后放入网箱,每个网箱60尾鱼,共9个网箱。每日7:00、12:00和18:
11、00进行饱食投喂。在实验期间,每晚20:00至次日清晨7:00使用沉水式充气管道进行连续充气增氧,特殊情况如阴雨天气时,额外在其他时间开启充氧。每天进行水质监测管理,在整个实验期间,水温为(332),水体溶氧6 mg/L,氨氮0.1 mg/L,养殖实验周期为50d。1.31.3 样品采集用麻醉剂MS-222(60 mg/L,Sigma,USA)将实验鱼麻醉后进行计数并称总重,然后取样。实验开始前,随机选取3组鱼,每组4尾,作为初样,在实验结束时,每个网箱随机选取2尾鱼抹干称重后作为末样,共同储存于20冰箱中,用于测定全鱼体成分。每个网箱取3尾鱼进行体长和体重的测量,并解剖肝脏和内脏团称重用于计
12、算肝体比、脏体比和肥满度。再在每个网箱随机取2尾鱼用肝素钠(浓度0.2%)抗凝剂浸润过的注射器进行尾静脉采表 1 实验饲料配方和化学组成(%干物质)Tab.1 Formulation and chemical composition of experimentaldiets(%dry matter)原料Ingredient对照组CON低蛋白组LP补充必需氨基酸组LP+EAA秘鲁鱼粉Peruvian fishmeal3.002.252.25谷朊粉Wheat gluten20.0015.0013.60酪蛋白Casein20.0015.0013.60玉米淀粉Corn starch26.0041.00
13、41.00鱼油Fish oil4.004.004.00豆油Soybean oil4.004.004.00矿物盐预混物Mineral premix15.005.005.00维生素预混物Vitamin premix20.390.390.39氯化胆碱Choline chloride0.110.110.11蛋氨酸Methionine0.060.040.32赖氨酸Lysine1.451.092.03苏氨酸Threonine0.520.390.90精氨酸Arginine0.140.100.56组氨酸Histidine0.20纤维素Cellulose15.3311.6312.04化学组成Chemical c
14、omposition粗蛋白Crude protein35.3628.2428.30粗脂肪Crude lipid7.288.118.40能量Gross energy(kJ/g)17.5917.9317.30注:1矿物盐预混物Mineral premix(mg/kg diet):NaCl,500.0;MgSO47H2O,8155.6;NaH2PO42H2O,12500.0;KH2PO4,16000.0;CaHPO42H2O,7650.6;FeSO47H2O,2286.2;C6H10CaO65H2O,1750.0;ZnSO47H2O,178.0;MnSO4H2O,61.4;CuSO45H2O,15.
15、5;CoSO47H2O,0.9;KI,1.5;Na2SeO3,0.6;玉米淀粉Corn starch,899.7;2维生素预混物 Vitamin premix(mg/kg diet):维生素B1 Thiamin,20.0;维生素B2 Riboflavin,20.0;维生素B6 Pyridoxine,20.0;维生素B12 Cyanocobalamine,0.02;叶酸Folic acid,5.0;泛酸钙Calciumpatothenate,50.0;肌醇Inositol,100.0;烟酸Niacin,100.0;生物素Biotin,0.1;维生素CAscorbic acid,100.0;维生素
16、 A Retinol,110.0;维生素D VitaminD,20.0;维生素E Vitamin E,50.0;维生素K Vitamin K,10.0;玉米淀粉Corn starch,645.22水 生 生 物 学 报48 卷血,然后于4下3000 r/min离心10min后,取出上清液血浆分装于200 L的PCR管中,储存于80冰箱用于血浆生化指标分析。同时,将抽完血的2尾鱼在冰浴条件下进行解剖,取出肝脏、肠道和肌肉组织,置于液氮中速冻然后放于80冰箱保存备用。1.41.4 样品分析首先对用于体成分分析的实验鱼样品进行预处理:将称重后的实验鱼放于高压蒸汽灭菌锅(ES-315,Tomy Kog
17、yo Co.,Japan)中120下蒸煮20min,冷却后捣碎,在70烘箱中烘干,称重,最后用粉碎机将其粉碎用于后续体成分分析。饲料、全鱼、肝脏和背肌样品的水分、蛋白质、脂肪和灰分的测定均根据(AOAC,2003)标准方法进行。干物质通过失重法在烘箱(电热恒温干燥箱,精宏,中国上海)中105烘干至恒重进行测定;灰分通过失重法在马弗炉(中国湖北英山县建立电炉制造厂)中550下煅烧后进行测定;粗蛋白采用凯式定氮仪(2300,Kjeltec Analyzer Unit,FOSSTecator,Sweden)进行测定;全鱼粗脂肪采用索氏抽提仪(Soxtec System HT6,Tecator,Hog
18、anas,Sweden)进行抽提测定,肝脏和背肌脂肪采用氯仿甲醇抽提法进行测定;饲料氨基酸含量采用茚三酮柱后衍生法,样品用约10 mL 6 mol/L的浓盐酸在110下水解24h后,滤纸过滤并定容至50 mL,取1 mL滤液于氮吹仪60下氮吹干脱酸,再加入12 mL去离子水,经氨基酸全自动分析仪(A300,membraPure,Germany)上机检测(色氨酸水解过程被破坏,未检测)。血浆葡萄糖和总蛋白含量采用南京建成生物工程研究所的试剂盒(A154-1-1和A045-2-2)进行检测;血浆和肝脏谷草转氨酶和谷丙转氨酶活性也采用南京建成生物工程研究所试剂盒(C010-2-1和C009-2-1)
19、进行测定;肠道消化酶糜蛋白酶、胰蛋白酶、淀粉酶及脂肪酶等活性采用南京建成生物工程研究所的试剂盒(A080-3-1、A080-2-2、C016-1-1和A054-1-1)进行检测。基因实时荧光定量PCR相关引物序列见表 3。肠道、肝脏和背肌组织样品中总RNA提取采用TRIzol试剂(Invitrogen,USA)依据说明书推荐的方法进行,然后使用1.0%琼脂糖电泳检测总RNA的完整性,NanoDropND-2000(NanoDrop Technologies,USA)测定样品RNA纯度和浓度。接着用M-MLVFirst-Strand Synthesis Kit(Invitrogen,USA)推荐
20、方法进行反转录,总反应体系为20 L。用Light Cycle表 2 饲料必需氨基酸组成(%干重)Tab.2 Essential amino acid composition of diets(%dry matter)必需氨基酸Essentialaminoacid对照组CON低蛋白组LP补充必需氨基酸组LP+EAA需求量Requirement蛋氨酸Met0.850.610.870.8921赖氨酸Lys2.982.393.013.3022苏氨酸Thr1.671.241.711.7023精氨酸Arg1.451.081.491.5012组氨酸His0.840.650.790.8024亮氨酸Leu2.
21、932.161.981.8023异亮氨酸Ile1.841.361.361.3023缬氨酸Val2.181.621.691.7023苯丙氨酸Phe1.781.341.271.1024色氨酸Trp1N.DN.DN.D0.2624注:1色氨酸水解被破坏Note:1Tryptophan is disrupted表 3 实时荧光定量PCR引物序列Tab.3 Primers sequence of quantitative RT-PCR(qPCR)基因名称Gene name引物Primer(53)GenBank登录号AccessionNo.产物长度Productlength(bp)pept1TGGTGTG
22、TTTTGGGACGACAXM026214118.1181CCATAAAAGAGCGTCACCTGCcat2TCATCAGGTGGAAGAATGCTGGXM026281019.1248ACAGATGCAAGAGCAGCGATasct2TTTTACGCATGCCCTAATAGTTCTGXM026282721.1193ATAAAGGGAATCGGCACGGAb0at1TCCCCTACAGATACCCACCGXM026284363.1154TGGGCTTTGTTGTCCCACTTb0,+atGGGATAAGAAGTGGAGCCCATCXM026267643.1227CGAGCCGATCATTGTTC
23、CCAtorTTGATGGCACGGTGTTTCCTAAKF772613195GCCCTGGTTCTGGTGCTTGTAG4ebp2CACTTTATTCTCCACCACCCKF900277175GATGTTGTTAGCCTCATTCCTs6k1CGAGCTGGAGTTAATAGGGTTKF880601243AGGTGACATGCACCATCTATGeif4eAAAATCTGCGTCTCATCTCCMF461722150TATTCCTGTCATCCTCCCAC-actinTTGAGCAGGAGATGGGAACCGAB039726.2115AGAGCCTCAGGGCAACGGAAAef1GTTGG
24、AGTCAACAAGATGGACTCCACAB056104198CTTCCATCCCTTGAACCAGCCCAT1 期何林岳等:低蛋白饲料补充必需氨基酸对异育银鲫生长、氨基酸转运和mTOR信号通路相关基因的影响3480系统(Roche Diagnostics,Switzerland)及SY-BRGreen I Master Mix(Roche Diagnostics,USA)荧光染色试剂进行RT-PCR实时荧光定量检测。反应体系为:3 L SYBR Green PCR Master Mix,2 LcDNA,0.24 L Primer F,0.24 L Primer R和0.52 LPCR wa
25、ter,共计6 L。选用-actin和ef1作为内参基因,预实验确定扩增效率,用内参和目的基因做标准曲线。计算公式如下:比率=(E目标基因)Ct(对照组处理组)/(E内参基因)Ct(对照组处理组)式中,E目标基因为目标基因的扩增效率,E内参基因为内参基因-actin和ef1的扩增效率,Ct为Thresholdcycle,临界循环数,即荧光阈值与扩增曲线相交,交点所对应的循环数。1.51.5 数据处理与分析本实验所有数据均使用SPSS 21.0进行统计分析,采用均值标准误的形式(meanSE,n=6)。实验结果首先进行方差齐性检验,然后进行单因素方差分析(One-way ANOVA),并进行Du
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